Bradford試劑蛋白定量是一種快速、即用型的總蛋白光學(xué)定量方法。在酸性條件下，考馬斯亮藍G-250染料與蛋白質(zhì)疏水區(qū)結(jié)合，導(dǎo)致最大吸收峰由465 nm變?yōu)?95 nm，同時顏色也由棕色變?yōu)樗{色，該藍色化合物顏色的深淺與蛋白質(zhì)濃度的高低成正比關(guān)系。將蛋白質(zhì)樣品或稀釋的BSA與Bradford試劑混合，測量在595 nm處的吸收值，在由一系列稀釋的BSA建立的標(biāo)準(zhǔn)曲線的情況下，蛋白質(zhì)的濃度可以根據(jù)標(biāo)準(zhǔn)曲線而確定。

Bradford實驗原理：考馬斯亮藍G250,在游離狀態(tài)下呈棕色，最大光吸收在488nm；當(dāng)它與蛋白質(zhì)結(jié)合后變?yōu)?/span>藍色，蛋白質(zhì)—色素結(jié)合物在595nm波長下有最大光吸收。其光吸收值與蛋白質(zhì)含量成正比，因此可用于蛋白質(zhì)的定量測定。蛋白質(zhì)與考馬斯亮藍結(jié)合在2min左右的時間內(nèi)達到平衡，完成反應(yīng)十分迅速；其結(jié)合物在室溫下1h內(nèi)保持穩(wěn)定。該法試劑配制簡單，操作簡便快捷，反應(yīng)非常靈敏，靈敏度比Lowry法還高4倍，可測定微克級蛋白質(zhì)含量。

一、優(yōu)點

1. 靈敏度高，據(jù)估計比Lowry法約高四倍，其最低蛋白質(zhì)檢測量可達1ug。這是因為蛋白質(zhì)與染料結(jié)合后產(chǎn)生的顏色變化很大，蛋白質(zhì)-染料復(fù)合物有更高的消光系數(shù)，因而光吸收值隨蛋白質(zhì)濃度的變化比Lowry法要大的多。

2. 測定快速、簡便，只需加一種試劑。完成一個樣品的測定，只需要5分鐘左右。由于染料與蛋白質(zhì)結(jié)合的過程，大約只要2分鐘即可完成，其顏色可以在1小時內(nèi)保持穩(wěn)定，且在5分鐘至20分鐘之間，顏色的穩(wěn)定性最好。因而完全不用像Lowry法那樣費時和嚴(yán)格地控制時間。

3.干擾物質(zhì)少。如干擾Lowry法的K+，Na+，Mg2+離子，Tris緩沖液，糖和蔗糖，甘油，巰基乙醇，EDTA等均不干擾此測定法。

二、缺點

1. 由于各種蛋白質(zhì)中的精氨酸和芳香族氨基酸的含量不同，因此Bradford法用于不同蛋白質(zhì)測定時有較大的偏差，在制作標(biāo)準(zhǔn)曲線時通常選用g球蛋白為標(biāo)準(zhǔn)蛋白質(zhì)，以減少這方面的偏差。

2. 仍有一些物質(zhì)干擾此法的測定，主要的干擾物質(zhì)有:去污劑、Triton X-100、十二烷基硫酸鈉(SDS)和0.1N的NaOH。(如同0.1N的酸干擾Lowary法一樣)。

3. 標(biāo)準(zhǔn)曲線也有輕微的非線性，因而不能用Beer定律進行計算，而只能用標(biāo)準(zhǔn)曲線來測定未知蛋白質(zhì)的濃度。

根據(jù)標(biāo)準(zhǔn)曲線，根據(jù)測出的未知樣品的A595值，即可查出未知樣品的蛋白質(zhì)含量。